電壓鉗

其設計原理是根據離子作跨膜移動時形成了跨膜離子電流（I），而通透性即離子通過膜的難易程度，其膜電阻（R）的倒數，也就是膜電導（G）。因此，膜對某種離子通透性增大時，實際上時膜電阻變小，即膜對該離子的電導加大。根據歐姆定律V=IR，即I=V/R=VG，所以，只要固定膜兩側電位差（V）時，測出的跨膜電流（I）的變化，就可作為膜電導變化的度量，即可了解膜通透性的改變情況。

電壓鉗裝置（附件1）有兩個微電極插入細胞，一個是測量膜電位的微電極Em，它通過高阻抗前級放大器（XI）檢測膜電位（Em），並將信號輸入反饋放大器（FBA）；另一電極I’與FBA輸出端相連，用作向細胞內注入電流，FBA的兩個輸入端中一個接受電位Em的輸入，另一個接受指 令電位（C），當兩者電位相等時輸出電流為零，當兩者出現差異時，FBA經電極I’輸出向細胞內注入電流，該電流在膜兩側產生趨向於指令電位C的電位變化，如此構成一個使膜電位始終等於指令電位C的反饋電路，此時記錄的Im就可反映膜電導G的變化。其實Im就是經電極I’注入的電流，後者在電壓鉗制期間精確地對抗通道電流而使膜電流保持恆定。

電壓鉗的缺點：電壓鉗技術目前主要用於巨大細胞的全細胞電流研究，特別在分子克隆的卵母細胞表達電流的鑒定中發揮其它技術不能替代的作用。但也有其致命的弱點：

1、微電極需刺破細胞膜進入細胞，以致造成細胞漿流失，破壞了細胞生理功能的完整性；

2、不能測定單一通道電流。因為電壓鉗制的膜面積很大，包含著大量隨機開放和關閉著的通道，而且背景噪音大，往往掩蓋了單一通道的電流。

3、對體積小的細胞(如哺乳類中樞神經元，直徑在10－30μm之間)進行電壓鉗實驗，技術上有更大的困難。由於電極需插入細胞，不得不將微電極的尖端做得很細，如此細的尖端致使電極阻抗很大，常常是60～8OMΩ或120～150MΩ（取決於不同的充灌液）。這樣大的電極阻抗不利於作細胞內電流鉗或電壓鉗記錄時在短時間（0.1μs）內向細胞內注入電流，達到鉗制膜電壓或膜電流之目的。再者，在小細胞上插入的兩根電極可產生電容而降低測量電壓電極的反應能力.