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組蛋白
組蛋白
組蛋白是真核生物染色體的基本結構蛋白,是真核生物體細胞染色質中的鹼性蛋白質,含精氨酸和賴氨酸等鹼性氨基酸特別多,二者加起來約為所有氨基酸殘基的1/4。組蛋白是一類小分子鹼性蛋白質,有五種類型:H1、H2A、H2B、H3、H4,它們富含帶正電荷的鹼性氨基酸,能夠同DNA中帶負電荷的磷酸基團相互作用。
組蛋白圖片
親緣關係較遠的種屬中,四種組蛋白(H2A、H2A、H3、H4)氨基酸序列都非常相似,如海膽組織H3的氨基酸序列與來自小牛胸腺的H3的氨基酸序列間只有一個氨基酸的差異,小牛胸腺的H3的氨基酸序列與豌豆的H3也只有4個氨基酸不同。不同生物的H1序列變化較大,在某些組織中,H1被特殊的組蛋白所取代。如成熟的魚類和鳥類的紅細胞中H1則被H5所取代,精細胞中則由精蛋白代替組蛋白。染色質中的組蛋白與DNA的含量之比為1:1。
真核生物細胞核中組蛋白的含量約為每克DNA1克,大部分真核生物中有5種組蛋白,兩棲類、魚類和鳥類還有H5以替代或補充H1。
真核生物體細胞染色質中的鹼性蛋白質,含精氨酸和賴氨酸等鹼性氨基酸特別多,二者加起來約為所有氨基酸殘基的1/4。組蛋白與帶負電荷的雙螺旋DNA結合成DNA-組蛋白複合物。因氨基酸成分和分子量不同,主要分成5類。
組蛋白的甲基化修飾主要是由一類含有SET結構域的蛋白質來執行的,組蛋白甲基化修飾參與異染色質形成、基因印記、X染色體失活和轉錄調控等多種主要生理功能,組蛋白的修飾作用是表觀遺傳學研究的一個重要領域。組蛋白甲基化的異常與腫瘤發生等多種人類疾病相關,可以特異性地激活或者抑制基因的轉錄活性。研究發現,組蛋白甲基轉移酶的作用對象不僅僅限於組蛋白,某些非組蛋白也可以被組蛋白甲基轉移酶甲基化,這將為探明細胞內部基因轉錄、信號轉導、甚至個體的發育和分化機制提供更廣闊的空間。
染色質是由許多核小體組成的,H2A,H2B,H3和H4各2個分子構成的8聚體是核小體的核心部分,H1的作用是與線性 DNA結合以幫助後者形成高級結構。組蛋白是已知蛋白質中最保守的,例如,人類和豌豆的H4氨基酸序列只有兩個不同,人類和酵母的H4氨基酸序列也只有8個不同,這說明H4的氨基酸序列在約10^9年間幾乎是恆定的。
組蛋白於1834年由德國科學家A.科塞爾發現。早在1888年德國化學家科塞(A.Kossel)已從細胞核中分離出組蛋白,並認識到它們作為鹼性物質應在核中與核酸結合,但直到1974年才了解組蛋白的確切作用。一些實驗室隨後證明組蛋白以獨特的方式構成核小體的組分。
組蛋白是已知蛋白質中最保守的,例如,人類和豌豆的H4氨基酸序列只有兩個不同,人類和酵母的H4氨基酸序列也只有8個不同,這說明H4的氨基酸序列在約109年間幾乎是恆定的。
直至1990年代早期,組蛋白才被更多認識,並非純粹細胞核的惰性填充料,這部分基於馬克·普塔什尼(Mark Ptashne)等人的模型,他們認為轉錄是被蛋白質-DNA和蛋白質-蛋白質相互作用在很大程度上被激活裸DNA模板,就像細菌一樣。及后它的調控功能才被發現。
在1980年代,Yahli Lorch和羅傑·科恩伯格(Roger Kornberg)表明,核心啟動子上的核小體體外阻止了轉錄的啟動,邁克爾·格倫斯坦(Michael Grunstein)證明組蛋白在體內抑制轉錄,導致核小體為 一般基因阻遏物。
組蛋白修飾與基因轉錄
組蛋白是存在於染色體內的與DNA結合的鹼性蛋白質,染色體中組蛋白以外的蛋白質成分稱非組蛋組蛋白白。絕大部分非組蛋白呈酸性,因此也稱酸性蛋白質或剩餘蛋白質。組蛋白於1834年由德國科學家A.科塞爾發現。組蛋白對染色體的結構起重要的作用。
通常含有H1,H2A,H2B,H3,H4等5種成分。除H1外,其他4種組蛋白均分別以二聚體(共八聚體)相結合,形成核小體核心。DNA便纏繞在核小體的核心上。而H1則與核小體間的DNA結合。因此,一般認為組蛋白作為結構支持體的作用比其基因調節作用更為重要。鳥類、兩棲類等含有細胞核的紅細胞中,含有一種叫H5的特殊組蛋白。此外,在停止增殖的細胞中,還含有一種叫H1°的組蛋白,H1°的結構與H5相類似。組蛋白可受到甲基化、乙醯化、磷酸化、聚ADP核糖醯化,以及與泛醌(ubiquinone)相結合等幾種類型的修飾。組蛋白的修飾與染色質結構的變化及基因活性控制的相關性等等,是今後的重要研究課題。
種類 | 賴氨酸/精氨酸 | 殘基數 | 分子質量(kd) | 保守性 | 存在部位及結構作用 |
H1 | 29.0 | 215 | 23.0 | 低 | 連接線上,鎖定核小體、參與包裝 |
H2A | 1.22 | 129 | 14.0 | 高 | 核心顆粒,形成核小體 |
H2B | 2.66 | 125 | 13.8 | 高 | 核心顆粒,形成核小體 |
H3 | 0.77 | 135 | 15.3 | 極高 | 核心顆粒,形成核小體 |
H4 | 0.79 | 102 | 11.3 | 極高 | 核心顆粒,形成核小體 |
H1富含鹼性氨基酸
幾乎所有真核細胞染色體的組蛋白均可分成5種主要的組分,分別用字母或數字命名,命名方法也不統一,如H1或稱F1,Ⅰ;H2A或稱F2A2,Ⅱb1;H2B或稱F2B,Ⅱb2;H3或稱F3,Ⅲ;H4或稱F2A1,Ⅳ。有核的紅細胞或個別生物體中,還存在特別的組蛋白成分,紅細胞中為H5或F2C,Ⅴ,鮭魚組織中為H6或T。H2A、H2B、H3、H4組成核小體的核心,也稱核心組蛋白。
根據組蛋白的一級結構,又可將它們分為3種類型:賴氨酸含量特別豐富的組蛋白(H1);賴氨酸含量較豐富的組蛋白(H2A和H2B);精氨酸含量豐富的組蛋白(H3和H4)。
先以組蛋白名稱開始,如H3;單一字母的氨基酸簡稱,如K代表賴氨酸,及在蛋白質的位置;及修飾的種類,Me即甲基化、P即磷酸化、Ac即乙醯化及Ub即泛素化。
組蛋白的甲基化修飾主要是由一類含有SET結構域的蛋白來執行的,組蛋白甲基化修飾參與異染色質形成、基因印記、X染色體失活和轉錄調控等多種主要生理功能,組蛋白的修飾作用是表觀遺傳學研究的一個重要領域。
組蛋白甲基化的異常與腫瘤發生等多種人類疾病相關,可以特異性地激活或者抑制基因的轉錄活性。研究發現,組蛋白甲基轉移酶的作用對象不僅僅限於組蛋白,某些非組蛋白也可以被組蛋白甲基轉移酶甲基化,這將為探明細胞內部基因轉錄、信號轉導、甚至個體的發育和分化機制提供更廣闊的空間。
乙醯化有兩種,一種是H1、H2A、H4組蛋白的氨基末端乙醯化,形成α-乙醯絲氨酸,組蛋白在細胞質內合成后輸入細胞核之前發生這一修飾。二是在H2A、H2B、H3、H4的氨基末端區域的某些專一位置形成N6-乙醯賴氨酸。
所有組蛋白的組分均能磷酸化,在細胞分裂期間,H1的1~3個絲氨酸可以磷酸化。而在有絲分裂時期,H1有3~6個絲氨酸或蘇氨酸發生磷酸化,其他四個核心組蛋白的磷酸化可以發生在氨基末端區域的絲氨酸殘基上。組蛋白的磷酸化可能會改變組蛋白與DNA的結合。
組蛋白H1、H2A、H2B及H3和多聚ADP-核糖的共價結合,ADP-核糖基化被認為是在真核細胞內啟動複製過程的扳機。
賴氨酸的丙醯化、丁醯化、琥珀醯化、巴豆醯化、丙二酸醯等。
H3·H4的乙醯化可打開一個開放的染色質結構,增加基因的表達。轉錄共同激活物如CBPöP300、PCAF實質上是體內的組蛋白乙醯基轉移酶(HAT)。相反,HDAC參與組成轉錄共同抑制複合物,已發現的兩個共同抑制複合物SIN3、Mi22NHRD(核小體重塑蛋白去乙醯基酶)都含有HDAC1、HDAC2。SIN3的組成為核心(HDAC1、HDAC2、RBAP46öRBAP48)SIN3AöSIN3B、SAP30öSAP18共同構成。
SIN3複合物通過組分SIN3A與序列特異性轉錄因子或共同抑制物包括mael2max,核激素受體N2CORöSMRT、甲基化CPG粘附蛋白(MECP2、MBD2)相互作用。Mi22NHRD由核心(HDAC1、HDAC2、RBAP46öRBAP48)Mi2、MTA1öMTA2、MBD3組成,其中MBD3含有MBD樣序列,與甲基化DNA有低親和力,分析發現MBD3與甲基化有關的氨基酸被置換,由此推測MBD3與MBD2相互作用而使Mi22NURD與甲基化DNA結合。由此看出,DNA甲基化和組蛋白去乙醯化協同作用共同參與轉錄阻遏。
此外,Mi22NURD還有染色質重塑活性,所以SIN3和Mi22NURD可能分別在長期和短期轉錄阻遏調節中起作用。
在哺乳動物基因組中,組蛋白則可以有很多修飾形式.一個核小體由兩個H2A,兩個H2B,兩個H3,兩個H4組成的八聚體和147bp纏繞在外面的DNA組成.組成核小體的組蛋白的核心部分狀態大致是均一的,遊離在外的N-端則可以受到各種各樣的修飾,包括組蛋白末端的乙醯化,甲基化,磷酸化,泛素化等等。
組蛋白被甲基化的位點是賴氨酸和精氨酸.賴氨酸可以分別被一、二、三甲基化,精氨酸只能被一、二甲基化.在組蛋白H3上,共有5個賴氨酸位點可以被甲基化修飾。
一般來說,組蛋白H3K4的甲基化主要聚集在活躍轉錄的啟動子區域。組蛋白H3K9的甲基化同基因的轉錄抑制及異染色質有關。EZH2可以甲基化H3K27,導致相關基因的沉默,並且與X-Chromosomeinactivation相關。H3K36的甲基化同基因轉錄激活相關。
球形組蛋白修飾模式可預測低分級前列腺癌的複發危。這種修飾模式最終可作為前列腺或其他類型癌症的預后或診斷指標,也可作為預測何種患者患者會對一類組蛋白去乙醯酶抑製劑新葯產生反應的指標。考慮到組蛋白修飾模式的多樣性,其他組蛋白修飾位點的信息將有助於我們對患者進行進一步分類,包括那些高分極組的患者。應用免役組化及越來越多的的抗體檢測組蛋白修飾將有助於這種檢測指標在其他腫瘤中的應用。
組蛋白修飾與基因表達調控有關已經被廣泛的證明了。PierreEtchegary,StevenReppertandcoworkers的研究表明組蛋白修飾,特別是組蛋白乙醯化對於哺乳動物生物鐘的調控是非常重要的。
最新研究結果顯示:組蛋白修飾的整體模式可預測低分級前列腺癌的複發風險。該研究第一作者加利福尼亞大學的Siavash K. Kurdistani表示:這種修飾模式最終可作為前列腺或其他類型癌症的預后或診斷指標,也可作為預測何種患者、患者會對一類o組蛋白去乙醯酶抑製劑新葯產生反應的指標。Kurdistani解釋:某些組蛋白修飾模式會在一定水平上影響基因的表達,但具體機制尚不清楚。
組蛋白修飾與基因表達調控有關已經被廣泛的證明了。PierreEtchegary,StevenReppertandcoworkers的研究表明組蛋白修飾,特別是組蛋白乙醯化對於哺乳動物生物鐘的調控是非常重要的。
調控生物鐘的關鍵蛋白Clock和Bmal1驅動著三個period基因(Per1,2,3)和兩個細胞色素基因(Cry1,2)的表達。這5個基因的轉錄本覆蓋了生物24小時的時間。但奇怪的是Clock/Bmal1對Per啟動子的結合相對穩定,而它們對Cry1啟動子最強的結合卻反應著Cry1表達的最弱。在這篇文章中E發現是染色體結構的修飾來決定Per和Cry基因的轉錄的。
研究者發現在Per1和Per2的啟動子上組蛋白3的乙醯化在全天都存在,而RNA多聚酶Ⅱ也一直被招募在這些啟動子上。當H3被乙醯化和RNA多聚酶Ⅱ結合最強時,Per轉錄本水平最高,這說明H3的乙醯化可能通過促進將RNA多聚酶Ⅱ招募到啟動子上而促進基因的轉錄。Cry基因座位的表達也有類似的相關性。
研究者發現具有蛋白質乙醯化活性的p300在小鼠肝細胞中能與Clock組成複合物。研究者認為白天p300/Bmal1/Clock結合在啟動子上,促進H3乙醯化,RNA多聚酶Ⅱ招募到啟動子上而Per基因發生轉錄。夜間p300與Bmal1/Clock進行解離,導致組蛋白的去乙醯化而抑制基因的轉錄。
那麼,導致p300基因日夜節律的是什麼呢?
研究者發現是Cry對其進行負調控的結果,研究者發現Cry1,2抑制p300/Bmal1/Clock驅動的基因轉錄。他們認為可能是Cry對p300/Bmal1/Clock複合物進行去穩定性作用而對其功能進行抑制。乙醯化對基因表達的調控已經廣為人知,這個新的研究更讓人們確定組蛋白的乙醯化對基因表達的調控具有很廣泛的作用。